Preview

Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология

Расширенный поиск

Динамика экспрессии генов глутатион-S-трансфераз при подостром поражении печени акриламидом и на фоне коррекции

https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-212-4-107-112

Аннотация

Цель исследования заключалась в изучении влияния комплексных соединений оксиметилурацила на экспрессию генов глутатион-S-трансфераз в печени крыс в условиях ее токсического поражения акриламидом. Материалы и методы. Животные были распределены на 5 групп по 6 особей в каждой: контроль, акриламид, акриламид + комплексное соединение оксиметилурацила с аскорбиновой кислотой (МГ-1), акриламид + комплексное соединение оксиметилурацила с сукцинатом натрия (МГ-2), акриламид + комплексное соединение оксиметилурацила с ацетилцистеином (МГ-10). Препараты вводили за 1 час до воздействия токсиканта в течение 28 дней. После окончания эксперимента животных декапитировали, извлекали печень, которую замораживали в жидком азоте. Для анализа экспрессии генов использовали метод полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в режиме реального времени. Результаты. Воздействие акриламида существенно не влияло на экспрессию генов GSTP1, GSTT1 и GSTM1 в печени крыс, однако для всех исследуемых генов наблюдалась тенденция к повышению значения изучаемого показателя. Профилактическое введение комплексного соединения оксиметилурацила с сукцинатом натрия (МГ-2) приводило к статистически значимому снижению транскрипционной активности гена GSTM1 в условиях токсического поражения печени акриламидом. Заключение. Результаты исследования свидетельствуют о способности препарата МГ-2 подавлять экспрессию гена GSTM1 в печени крыс при воздействии акриламида. Необходимы дальнейшие исследования для более глубокого понимания молекулярных механизмов токсичности, вызванной акриламидом и разработки новых терапевтических подходов к лечению патологии печени.

Об авторах

Г. Ф. Мухаммадиева
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Т. Г. Якупова
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Д. О. Каримов
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Я. В. Валова
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Э. Ф. Репина
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Э. Р. Кудояров
ФБУН «Уфимский НИИ институт медицины труда и экологии человека»
Россия


Список литературы

1. Rifai L., Saleh F. A. A Review on Acrylamide in Food: Occurrence, Toxicity, and Mitigation Strategies.Int J Toxicol. 2020;39(2):93-102. doi: 10.1177/ 1091581820902405.

2. Törnqvist M. Acrylamide in food: the discovery and its implications: a historical perspective. Adv Exp Med Biol. 2005;561:1-19. doi: 10.1007/0-387-24980-X_1.

3. Keramat J., LeBail A., Prost C., Soltanizadeh N. Acrylamide in foods: Chemistry and analysis. A review. Food Bioprocess. Technol. 2011;4:340-363. doi: 10.1007/s11947-010-0470-x.

4. Tareke E., Rydberg P., Karlsson P. et аl. Analysis of acrylamide, a carcinogen formed in heated foodstuffs. J Agric Food Chem. 2002;50(17):4998-5006. doi: 10.1021/jf020302f.

5. Pan M., Liu K., Yang J. et аl. Review of Research into the Determination of Acrylamide in Foods. Foods. 2020;9(4): 524. doi: 10.3390/foods9040524.

6. Katen A.L., Roman S. D. The genetic consequences of paternal acrylamide exposure and potential for amelioration. Mutat Res. 2015;777:91-100. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2015.04.008.

7. Prasad S.N., Muralidhara. Evidence of acrylamide induced oxidative stress and neurotoxicity in Drosophila melanogaster - its amelioration with spice active enrichment: relevance to neuropathy. Neurotoxicology. 2012;33(5):1254-1264. doi: 10.1016/j.neuro.2012.07.006.

8. Acaroz U., Ince S., Arslan-Acaroz D. et al. The ameliorative effects of boron against acrylamide-induced oxidative stress, inflammatory response, and metabolic changes in rats. Food Chem Toxicol. 2018;118:745-752. doi: 10.1016/j.fct.2018.06.029.

9. Karimi M.Y., Fatemi I., Kalantari H. Ellagic Acid Prevents Oxidative Stress, Inflammation, and Histopathological Alterations in Acrylamide-Induced Hepatotoxicity in Wistar Rats. J Diet Suppl. 2020;17(6):651-662. doi: 10.1080/19390211.2019.1634175.

10. Sun R., Chen W., Cao X. et al. Protective effect of curcumin on acrylamide-induced hepatic and renal impairment in rats: involvement of CYP2E1. Nat Prod Commun. 2020;15(3):1-9. doi: 10.1177/1934578X20910548.

11. Mushkin V.A., Bakirov A. B., Repina E. F. et аl. Study the effectiveness of oxymethyluracil as a means hepatoprotective. Occupational health and human ecology. 2015;2:55-60. (In Russ.)@@ Мышкин В. А., Бакиров А. Б., Репина Э. Ф. и соавт. Изучение эффективности оксиметилурацила в качестве гепатозащитного средства. Медицина труда и экология человека. 2015;2:55-60.

12. Myshkin V.A., Enikeyev D. A., Srubilin D. V., Gimadieva A. R. Experimental evaluation of pyrimidine derivatives using models of the toxically damaged liver: a review. Scientific Review. Medical Sciences. 2016;3:88-98. (In Russ.)@@ Мышкин В. А., Еникеев Д. А., Срубилин Д. В., Гимадиева А. Р. Экспериментальная оценка производных пиримидина на моделях токсического поражения печени: обзор // Научное обозрение. Медицинские науки. 2016;3:88-98.

13. Halliwell B., Gutteridge J. M. Free radicals in biology and medicine. USA: Oxford University Press, 2015.

14. Dasari S., Ganjayi M. S., Meriga B. Glutathione S-transferase is a good biomarker in acrylamide induced neurotoxicity and genotoxicity.Interdiscip Toxicol. 2018;11(2):115-121. doi: 10.2478/intox-2018-0007.

15. Lee T., Manjanatha M. G., Aidoo A. et аl. Expression analysis of hepatic mitochondria-related genes in mice exposed to acrylamide and glycidamide. J Toxicol Environ Health A. 2012;75(6):324-339. doi: 10.1080/15287394.2012.668160.

16. Marković Filipović J., Miler M., Kojić D. et аl. Effect of Acrylamide Treatment on Cyp2e1 Expression and Redox Status in Rat Hepatocytes.Int J Mol Sci. 2022;23(11):6062. doi: 10.3390/ijms23116062.

17. Azari A., Shokrzadeh M., Zamani E. et аl. Cerium oxide nanoparticles protects against acrylamide induced toxicity in HepG2 cells through modulation of oxidative stress. Drug Chem. Toxicol. 2019;42:54-59. doi: 10.1080/01480545.2018.1477793.

18. Awad M.E., Abdel-Rahman M.S., Hassan S. A. Acrylamide toxicity in isolated rat hepatocytes. Toxicol. In Vitro. 1998;12:699-704. doi: 10.1016/S0887-2333(98)00051-4.

19. Yousef M.I., El-Demerdash F. M. Acrylamide induced oxidative stress and biochemical perturbations in rats. Toxicology. 2006;219:133-141. doi: 10.1016/j.tox.2005.11.008.


Рецензия

Для цитирования:


Мухаммадиева Г.Ф., Якупова Т.Г., Каримов Д.О., Валова Я.В., Репина Э.Ф., Кудояров Э.Р. Динамика экспрессии генов глутатион-S-трансфераз при подостром поражении печени акриламидом и на фоне коррекции. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2023;(4):107-112. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-212-4-107-112

For citation:


Mukhammadieva G.F., Yakupova T.G., Karimov D.O., Valova Ya.V., Repina E.F., Kudoyarov E.R. Dynamics of glutathione- S-transferase gene expression in subacute liver damage caused by acrylamide and on the background of correction. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2023;(4):107-112. (In Russ.) https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-212-4-107-112

Просмотров: 183


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-8658 (Print)