Синдром повышенной эпителиальной проницаемости: возможности современной фармакотерапии
https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-204-8-123-132
Аннотация
Синдром повышенной эпителиальной проницаемости (СПЭП) рассматривается как один из универсальных механизмов, обуславливающий последующее развитие хронического системного воспаления разной степени выраженности. Проведенные в последние 10 лет исследования показали важную роль СПЭП в патогенезе многих заболеваний внутренних органов, и, прежде всего, желудочно-кишечного тракта (ЖКТ). В статье обсуждаются возможные пути коррекции нарушения эпителиальной проницаемости с точки зрения цитопротекторных эффектов препаратов, наиболее часто назначаемых пациентам гастроэнтерологического профиля.
Об авторах
С. В. Туркина
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
Россия
М. Е. Стаценко
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
Россия
И. А. Тыщенко
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
Россия
Список литературы
1. Simanenkov V. I., Maev I. V., Tkacheva O. N., et al. Syndrome of increased epithelial permeability in clinical practice. Multidisciplinary national Consensus. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2021;20(1):2758. (In Russ.) doi: 10.15829/1728-8800-2021-2758.@@ Симаненков В. И., Маев И. В., Ткачева О. Н., и Соавт. Синдром повышенной эпителиальной проницаемости в клинической практике. Мультидисциплинарный национальный консенсус. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2021;20(1):2758. doi: 10.15829/1728-8800-2021-2758.
2. Perveen I., Rahman M. M., Saha M., et al. Prevalence of irritable bowel syndrome and functional dyspepsia, overlapping symptoms, and associated factors in a general population of Bangladesh. Indian J Gastroenterol. 2014;33(3):265-73. doi: 10.1007/s12664-014-0447-1.
3. Beeckmans D., Farré R., Riethorst D., et al. Relationship between bile salts, bacterial translocation, and duodenal mucosal integrity in functional dyspepsia. Neurogastroenterol Motil. 2020;32(5): e13788. doi: 10.1111/nmo.13788.
4. Singh P., Silvester J., Chen X., et al. Serum zonulin is elevated in IBS and correlates with stool frequency in IBS-D. United European Gastroenterol J. 2019;7(5):709-15. doi: 10.1177/2050640619826419.
5. Orlando L. A., Orlando R. C. Dilated intercellular spaces as a marker of GERD. Curr Gastroenterol Rep. 2009;11:190-4. doi: 10.1007/s11894-009-0030-6.
6. Dang Y., Zhang Y., Xu L., et al. PUMA-mediated epithelial cell apoptosis promotes Helicobacter pylori infection-mediated gastritis. Cell Death Dis. 2020;11(2):139 doi: 10.1038/s41419-020-2339-x.
7. Ruiz L., López P., Suárez A., et al. The role of gut microbiota in lupus: what we know in 2018? Expert Rev Clin Immunol. 2018;14(10):787-92. doi: 10.1080/1744666X.2018.1519395.
8. Sandek A., Bjarnason I., Volk H. D., et al. Studies on bacterial endotoxin and intestinal absorption function in patients with chronic heart failure.Int J Cardiol. 2012;157(1):80-5. doi: 10.1016/j. ijcard.2010.12.016.
9. Sweerus K., Lachowicz-Scroggins M., Gordon E., et al. Claudin-18 deficiency is associated with airway epithelial barrier dysfunction and asthma. J Allergy Clin Immunol. 2017;139(1):72-81.e1. doi: 10.1016/j.jaci.2016.02.035.
10. Keely S., Talley N. J., Hansbro P. M. Pulmonary-intestinal cross-talk in mucosal inflammatory disease. Mucosal Immunol. 2012;5:7-18. doi: 10.1038/mi.2011.55.
11. Hurst R. E., Greenwood-Van Meerveld B., Wisniewski A. B., et al. Increased bladder permeability in interstitial cystitis/painful bladder syndrome. Transl Androl Urol. 2015;4(5):563-71. doi: 10.3978/j.issn.2223-4683.2015.10.03.
12. Zhou N., Shen Y., Fan L., et al. The Characteristics of Intestinal Barrier Damage in Rats With IgA Nephropathy. Am J Med Sci. 2020;359(3):168-76. doi: 10.1016/j.amjms.2019.11.011.
13. Welcome M. O. Cellular mechanisms and molecular signaling pathways in stress-induced anxiety, depression, and bloodbrain barrier inflammation and leakage. Inflammopharmacology. 2020;28(3):643-65. doi: 10.1007/s10787-020-00712-8.
14. Ho S. B., Takamura K., Anway R., Shekels L. L., Toribara N. W., Ota H. The adherent gastric mucous layer is composed of alternating layers of MUC5AC and MUC6 mucin proteins. Dig Dis Sci. 2004 Oct;49(10):1598-606. doi: 10.1023/b: ddas.0000043371.12671.98.
15. Niv Y. Helicobacter pylori and gastric mucin expression: A systematic review and meta-analysis. World J Gastroenterol. 2015;21(31):9430-9436. doi: 10.3748/wjg.v21.i31.9430.
16. Yandrapu H., Sarosiek J. Protective Factors of the Gastric and Duodenal Mucosa: An Overview. Curr Gastroenterol Rep. 2015 Jun;17(6):24. doi: 10.1007/s11894-015-0452-2.
17. Samsonov А. А., Golubev N. N., Andreev N. G., Shcherbakova N. A. The protective barrier of the gastric mucosa and the possibility of drug cytoprotection. Handbook for Practitioners Doctors. 2018; 6: 40-48. (In Russ.)@@ Самсонов А. А., Голубев Н. Н., Андреев Н. Г., Щербакова Н. А. Защитный барьер слизистой оболочки желудка и возможности лекарственной цитопротекции. Справочник поликлинического врача. 2018; 6: 40-48.
18. Komuro Y., Ishii K., Miyake Y., Tanabe S., Oida M., Saigenji K. Effects of lansoprazole on gastric ulcer healing and mucin content. J Clin Gastroenterol. 1995;20 Suppl 2: S47-51. doi: 10.1097/00004836-199506002-00013.
19. Yoshimura K., Delbarre S. G., Kraus E., Boland C. R. The effects of omeprazole and famotidine on mucin and PGE2 release in the rat stomach. Aliment Pharmacol Ther. 1996 Feb;10(1):111-7. doi: 10.1111/j.1365-2036.1996.tb00184.x.
20. Jaworski T., Sarosiek I., Sostarich S., Roeser K., Connor M., Brotze S., Wallner G., Sarosiek J. Restorative impact of rabeprazole on gastric mucus and mucin production impairment during naproxen administration: its potential clinical significance. Dig Dis Sci. 2005;50(2):357-65. doi: 10.1007/s10620-005-1611-3.
21. Ford A. C., Malfertheiner P., Giguere M., et al. Adverse events with bismuth salts for Helicobacter pylori eradication: systematic review and meta-analysis. World J Gastroenterol. 2008;14(48):7361-70. doi: 10.3748/wjg.14.7361.
22. Schanova N. O., Prokhorova L. V. Improvement of Helicobacter pylori eradication efficacy at stomach and duodenum peptic ulcers.Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2016;26(2):11-18. (In Russ.) doi: 10.22416/1382-4376-2016-26-2-11-18.@@ Щанова Н. О., Прохорова Л. В. Возможности повышения эффективности эрадикации Helicobacter pylori у больных язвенной болезнью желудка и двенадцатиперстной кишки. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2016;26(2):11-18. doi: 10.22416/1382-4376-2016-26-2-11-18.
23. Zakharova N., Savilova I. Efficacy of reinforced eradication therapy in region of high claritromycin resistance. Helicobacter 2015; 20(Suppl 1):92
24. Ivashkin V. T., Mayev I. V., Lapina T. L., et al. Diagnostics and treatment of Helicobacter pylori infection in adults: Clinical guidelines of the Russian gastroenterological association.Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2018;28(1):55-70. (In Russ.) doi: 10.22416/1382-4376-2018-28-1-55-70.@@ Ивашкин В. Т., Маев И. В., Лапина Т. Л., Шептулин А. А., и Соавт. Клинические рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации по диагностике и лечению инфекции Helicobacter pylori у взрослых. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2018;28(1):55-70. doi: 10.22416/1382-4376-2018-28-1-55-70.
25. König J., Wells J., Cani P. D., García-Ródenas C.L., MacDonald T., Mercenier A., Whyte J., Troost F., Brummer R. J. Human Intestinal Barrier Function in Health and Disease. Clin Transl Gastroenterol. 2016;20;7(10): e196. doi: 10.1038/ctg.2016.54.
26. Mu Q., Kirby J., Reilly C. M., Luo X. M. Leaky Gut As a Danger Signal for Autoimmune Diseases. Front Immunol. 2017 May 23;8:598. doi:10.3389/fimmu.2017.00598.
27. Desai M. S., Seekatz A. M., Koropatkin N. M., Kamada N., Hickey C. A., Wolter M., et al. A dietary fiber-deprived gut microbiota degrades the colonic mucus barrier and enhances pathogen susceptibility. Cell 2016; 167(5):1339-53 e21. doi: 10.1016/j.cell.2016.10.043.
28. Johansson M. E., Jakobsson H. E., Holmen-Larsson J., Schutte A., Ermund A., Rodriguez-Pineiro A.M., et al. Normalization of host intestinal mucus layers requires long-term microbial colonization. Cell Host Microbe 2015; 18(5):582-92. doi: 10.1016/j.chom.2015.10.007.
29. Petersson J., Schreiber O., Hansson G. C., Gendler S. J., Velcich A., Lundberg J. O., et al. Importance and regulation of the colonic mucus barrier in a mouse model of colitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2011; 300(2): G327-G333. doi: 10.1152/ajpgi.00422.2010.
30. Wrzosek L., Miquel S., Noordine M. L., Bouet S., Joncquel Chevalier-Curt M., Robert V., et al. Bacteroides thetaiotaomicron and Faecalibacterium prausnitzii influence the production of mucus glycans and the development of goblet cells in the colonic epithelium of a gnotobiotic model rodent. BMC Biol 2013; 11:61. doi: 10.1186/1741-7007-11-61.
31. Forder R. E., Howarth G. S., Tivey D. R., Hughes R. J. Bacterial modulation of small intestinal goblet cells and mucin composition during early posthatch development of poultry. Poult Sci 2007; 86(11):2396-403. doi: 10.3382/ps.2007-00222.
32. Johansson M. E., Gustafsson J. K., Sjoberg K. E., Petersson J., Holm L., Sjovall H., et al. Bacteria penetrate the inner mucus layer before inflammation in the dextran sulfate colitis model. PLoS One 2010; 5(8): e12238. doi: 10.1371/journal.pone.0012238.
33. Kaibysheva V. O., Zharova M. E., Filimendikova K. Yu., Nikonov E. L. Human Microbiome: age-related changes and functions.Russian Journal of Evidence-Based Gastroenterology. 2020;9(2):42-55. (In Russ.) doi: 10.17116/dokgastro2020902142.@@ Кайбышева В. О., Жарова М. Е., Филимендикова К. Ю., Никонов Е. Л. Микробиом человека: возрастные изменения и функции. Доказательная гастроэнтерология. 2020;9(2):42-55. doi: 10.17116/dokgastro2020902142.
34. Mandato C., Di Nuzzi A., Vajro P. Nutrition and Liver Disease. Nutrients. 2018;10(1):9. doi: 10.3390/nu10010009.
35. Albillos A., de Gottardi A., Rescigno M. The gut-liver axis in liver disease: Pathophysiological basis for therapy. J Hepatol. 2020 Mar;72(3):558-577. doi: 10.1016/j.jhep.2019.10.003.
36. Madsen K., Cornish A., Soper P., et al. Probiotic bacteria enhance murine and human intestinal epithelial barrier function. Gastroenterology. 2001;121(3):580-591. doi: 10.1053/gast.2001.27224.
37. Zareie M., Johnson-Henry K., Jury J., et al. Probiotics prevent bacterial translocation and improve intestinal barrier function in rats following chronic psychological stress. Gut. 2006;55(11):1553-1560. doi: 10.1136/gut.2005.080739.
38. Zyrek A. A., Cichon C., Helms S., Enders C., Sonnenborn U., Schmidt M. A. Molecular mechanisms underlying the probiotic effects of Escherichia coli Nissle 1917 involve ZO-2 and PKCzeta redistribution resulting in tight junction and epithelial barrier repair. Cell Microbiol. 2007;9(3):804-816. doi: 10.1111/j.1462-5822.2006.00836.x.
39. Bron P. A., Kleerebezem M., Brummer R. J., et al. Can probiotics modulate human disease by impacting intestinal barrier function?. Br J Nutr. 2017;117(1):93-107. doi: 10.1017/S0007114516004037.
40. Gotteland M., Cruchet S., Verbeke S. Effect of Lactobacillus ingestion on the gastrointestinal mucosal barrier alterations induced by indometacin in humans. Aliment Pharmacol Ther. 2001;15(1):11-17. doi: 10.1046/j.1365-2036.2001.00898.x.
41. Ghouri Y. A., Richards D. M., Rahimi E. F., Krill J. T., Jelinek K. A., DuPont A. W. Systematic review of randomized controlled trials of probiotics, prebiotics, and synbiotics in inflammatory bowel disease. Clin Exp Gastroenterol. 2014;7:473-487. Published 2014 Dec 9. doi: 10.2147/CEG.S27530.
42. Ramezani Ahmadi A., Sadeghian M., Alipour M., Ahmadi Taheri S., Rahmani S., Abbasnezhad A. The Effects of Probiotic/Synbiotic on Serum Level of Zonulin as a Biomarker of Intestinal Permeability: A Systematic Review and Meta-Analysis. Iran J Public Health. 2020;49(7):1222-1231. doi: 10.18502/ijph.v49i7.3575.
43. Ivashkin V. T., Mayev I. V., Abdulganieva D. I., et al. Practical Recommendations of Scientific Society for the Study of Human Microbiome and Russian Gastroenterological Association (RGA) for Probiotics in Treatment and Prevention of Gastroenterological Diseases in Adults.Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2020;30(2):76-89. (In Russ.) doi: 10.22416/1382-4376-2020-30-2-76-89.@@ Ивашкин В. Т., Маев И. В., Абдулганиева Д. И., и соавт. Практические рекомендации Научного сообщества по содействию клиническому изучению микробиома человека (НСОИМ) и Российской гастроэнтерологической ассоциации (РГА) по применению пробиотиков для лечения и профилактики заболеваний гастроэнтерологического профиля у взрослых. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2020;30(2):76-89. doi: 10.22416/1382-4376-2020-30-2-76-89.
44. WGO Global Guideline Probiotics and prebiotics, 2017 URL: https://www.worldgastroenterology.org/guidelines/probiotics-and-prebiotics
45. Zvyaglova M. Yu., Knyazev O. V., Parfenov A. I. Pharmacological and clinical feature of rebamipide: new therapeutic targets. Therapeutic Archive. 2020; 92 (2): 104-111. (In Russ) doi: 10.26442/00403660.2020.02.000569.@@ Звяглова М. Ю., Князев О. В., Парфенов А. И. Фармакологический и клинический профиль ребамипида: новые терапевтические мишени. Терапевтический архив. 2020; 92 (2): 104-111. doi: 10.26442/00403660.2020.02.000569.
46. Suzuki T., Yoshida N., Nakabe N., et al. Prophylactic effect of rebamipide on aspirin-induced gastric lesions and disruption of tight junctional protein zonula occludens-1 distribution. J Pharmacol Sci. 2008;106(3):469-77. doi: 10.1254/jphs.FP0071422.
47. Tarnawski A. S., Chai J., Pai R., Chiou S. K. Rebamipide activates genes encoding angiogenic growth factors and Cox2 and stimulates angiogenesis: a key to its ulcer healing action?. Dig Dis Sci. 2004;49(2):202-209. doi: 10.1023/b: ddas.0000017439.60943.5c.
48. Markovic M., Zur M., Dahan A., Cvijić S. Biopharmaceutical characterization of rebamipide: The role of mucus binding in regional-dependent intestinal permeability. Eur J Pharm Sci. 2020;152:105440. doi: 10.1016/j.ejps.2020.105440.
49. Miyazaki K., Kishimoto H., Muratani M., Kobayashi H., Shirasaka Y., Inoue K. Mucins are Involved in the Intestinal Permeation of Lipophilic Drugs in the Proximal Region of Rat Small Intestine. Pharm Res. 2019;36(11):162. Published 2019 Sep 16. doi: 10.1007/s11095-019-2701-9.
50. Joh T., Takezono Y., Oshima T., et al. The protective effect of rebamipide on paracellular permeability of rat gastric epithelial cells. Aliment Pharmacol Ther. 2003;18 Suppl 1:133-138. doi: 10.1046/j.1365-2036.18.s1.15.x.
51. Kurata S., Nakashima T., Osaki T., et al. Rebamipide protects small intestinal mucosal injuries caused by indomethacin by modulating intestinal microbiota and the gene expression in intestinal mucosa in a rat model. J Clin Biochem Nutr. 2015;56(1):20-27. doi: 10.3164/jcbn.14-67.
52. Kohata Y., Nakahara K., Tanigawa T., et al. Rebamipide Alters the Esophageal Microbiome and Reduces the Incidence of Barrett’s Esophagus in a Rat Model. Dig Dis Sci. 2015;60(9):2654-2661. doi: 10.1007/s10620-015-3662-4.
Рецензия
Для цитирования:
Туркина С.В., Стаценко М.Е., Тыщенко И.А. Синдром повышенной эпителиальной проницаемости: возможности современной фармакотерапии. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2022;(8):123-132. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-204-8-123-132
For citation:
Turkina S.V., Statsenko M.E., Tyshchenko I.A. Syndrome of increased epithelial permeability: opportunities of current pharmacotherapy. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2022;(8):123-132. (In Russ.) https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-204-8-123-132
Просмотров:
2394
Послать статью по эл. почте 