Морфофункциональная оценка гастропротективного действия экстракта сухого Ferulopsis hystrix (Bunge) Pimenov при нейрогенной язве

Цель исследования: морфофункциональная оценка гастропротективной активности экстракта сухого из корней и корневищ Ferulopsis hystrix при нейрогенной язве.

Материалы и методы. Исследования проведены на белых крысах линии Wistar. Нейрогенную язву моделировали 24-часовой иммобилизацией животных. Гастропротективное действие F. hystrix оценивали по значению индекса Паулса, который рассчитывали для кровоизлияний, эрозий и полосовидных язв, а также по морфометрическим показателям (глубина эрозий) слизистой оболочки желудка. Интенсивность процессов перекисного окисления липидов характеризовали по содержанию малонового диальдегида (МДА), состояние антиоксидантной системы — по активности каталазы, супероксиддисмутазы и содержанию восстановленного глутатиона.

Результаты. Установлено, что экстракт F. hystrix в дозах 100 и 150 мг/кг способствует ограничению развития деструкций в слизистой оболочке желудка на фоне нейрогенной язвы, уменьшая глубину эрозий на 43% и 80%. Экстракт F. hystrix в указанных дозах снижал концентрацию МДА в среднем на 37%, повышал активность каталазы — в 2,0 раза, содержание ВГ — в 2,6 раза, активность СОД – 3,8 и 2,8 раза соответственно.

Вывод: Ferulopsis hystrix обладает гастропротективным влиянием при нейрогенной язве.

1. Саватеева-Любимова Т.Н., Сивак К. В., Малинин В. В. Гастропротективная активность аналогов дипептида глутамил-триптофана и мелатонина // Экспериментальная и клиническая фармакология. – 2012. – Т. 75, № 2. – С. 17–21.

2. Тараскин В.В., Раднаева Л. Д., Жигжитжапова С. В., и др. Выделение рабочего стандартного образца пеуценидина – ангулярного фурокумарина зонтичных флоры Бурятии и Монголии // Вестник Бурятского государственного университета. – 2011. – Вып.3. – С. 111–115.

3. Ganbaatar J., Shults E. E., Otgonsuren D., et. al. Coumarins from Peucedanum hystrix growing in Mongolia. Mongolian Journal of Chemistry. 2011, no. 12, pp. 42–49.

4. Heide L. The aminocoumarins: biosynthesis and biology // Natural Product. Reports. – 2009. – Vol. 26. – P. 1241–1250.

5. Kontogiorgis C.A., Hadjipavlou-Litina D. J. Synthesis and antiin-flammatory activity of coumarin derivatives. Journal of Medicinal Chemistry. 2005;48(20):6400–6408.

6. Patel D., Kumar R., Prasad S. et. al. Antidiabetic and in vitro antioxidant potential of Hybanthus enneaspermus (Linn) F. Muell in streptozotocin-induced diabetic rats. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 2011;1(4):316–322.

7. Парфёнов Э.А., Трапков В. А., Шабанов П. Д. Редокс – регуляция как надежная платформа поиска и разработки лекарств нового типа. Поиск гастропротекторов среди замещенных кумаринов // Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. – 2014. – № 3. – С. 22–42.

8. Багинская А.И., Ферубко Е. В., Курманова Е. Н. и др. Экспериментальные модели эрозивно-язвенных поражений желудка и двенадцатиперстной кишки. – М.: «Издательский дом «Русский врач», 2017. – 96 с.

9. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагностике / под ред. В. С. Камышникова. М.: «МЕДпресс информ», 2009. 890 с.

10. Королюк М.А., Иванова Л. И., Майорова И. Г. Методы определения активности каталазы // Лабораторное дело. – 1988. – № 6. – С. 16–19.

11. Матюшин Б.Н., Логинов А. С., Ткачев В. Д. Определение супероксиддисмутазной активности в материале пункционной биопсии печени при ее хроническом поражении // Лабораторное дело. – 1991. – № 7. – С. 16–19.

12. Shaik I.H., Mehvar R. Rapid determination of reduced andoxidized glutathione levels using a new thiolmasking reagent and the enzymatic recycling method: Application to the rat liver and bile samples. Anal Bioanal Chem. 2006, Vol. 385, no. 1, P. 105113.

13. Шахмарданова С.А., Гулевская О. Н., Селецкая В. В. и др. Антиоксиданты: классификация, фармакотерапевтические свойства, использование в практической медицине // Журнал фундаментальной медицины и биологии – 2016. – № 3. – С. 4–15.