Особенности молекулярного патогенеза гастроэнтерита, вызванного нетифоидными сероварами сальмонелл
Марина Николаевна Бойченко,
Роман Евгеньевич Бошьян,
Елена Вячеславовна Буданова,
Галина Николаевна Усатова https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-205-9-216-221
Аннотация
Развитие гастроэнтеритов, вызванных нетифоидной группой сальмонелл (НТС) Salmonella enterica, связано с действием эффекторных молекул секреторных систем третьего типа (Т3СС-1 и Т3СС-2), экспрессируемых 1 и 2 островами патогенности генома S. enterica. Эффекторы, секретируемые Т3СС-1, обеспечивают проникновение НТС в клетку хозяина, участвуют в развитии воспалительной диареи, а некоторые из их являются предрасполагающими факторами в развитии колоректального рака (КРР). С другой стороны, эффекторы, секретируемые Т3СС-2, обеспечивают внутриклеточное существование НТС и способствуют «побегу» микроба от иммунного ответа организма хозяина и развития адаптивного иммунитета, что способствует персистенции сальмонелл
Ключевые слова
Об авторах
Марина Николаевна Бойченко
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Россия
Роман Евгеньевич Бошьян
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Россия
Елена Вячеславовна Буданова
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Россия
Галина Николаевна Усатова
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия
Россия
Список литературы
1. Ohad Gal-Mor. Persistent Infection and Long-Term Carriage of Typhoidal and Nontyphoidal Salmonellae. Clinical Microbiology Review. 2019 Jan; 32(1): e00088-18. Published online Nov 28. doi:10.1128/CMR.00088-18
2. Rana S., Maurya S., Chadrasekhar H., Srikanth C. V. Molecular determinants of peaceful coexistence versus invasiveness of non-Typhoidal Salmonella: Implications in long-term side-effects. Mol Aspects Med. 2021;81:100997. doi:10.1016/j.mam.2021.100997
3. Jeffrey D Stanaway. The global burden of non-typhoidal salmonella invasive disease: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet Infec. Dis. 2019 Dec;19(12):1312-1324. doi:10.1016/S1373-3099(19)30418-9
4. Boichenko M. N., Bosh’ian R.E., Kravtsova E. O., Budanova E. V. About the role of causative agent of typhoid fever in the development of gallbladder cancer. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2020;(6):154-157. (In Russ.) doi:10.31146/1682-8658-ecg-178-6-154-157 @@Бойченко М. Н., Бошьян Р. Е., Кравцова Е. О., Буданова Е. В. О роли возбудителя брюшного тифа в развитии рака желчного пузыря. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2020.178(6): 154-157. doi:10.31146/1682-8658-ecg-178-6-154-157
5. Stanaway J.D., Parisi A., Sarkar K., Blacker B. F., et al. The global burden of non-typhoidal salmonella invasive disease: A systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet Infect. Dis. 2019, 19: 1312-1324. doi:10.1016/S14473-3099(19)30418-9
6. Jajere S.M. A review of Salmonella enterica with particular focus on the pathogenicity and virulence factors, host specificity and antimicrobial resistance including multidrug resistance. Vet. World. 2019,12(4): 504-521. doi:14202/vetword.2019.504-521
7. Chen H.M., Wang Y., Su L. H., Chiu C. H. Nontyphoid salmonella infection: microbiology, clinical features, and antimicrobial therapy. Pediatr. Neonatol. 2013, 54(3):147-52. doi:10.1016/j.pedneo.2013.01.010
8. Gunn J.S., Marshall J. M., Baker S., Dongol S., Charles R. C., Ryan E. T. Salmonella chronic carriage: epidemiology, diagnosis, and gallbladder persistence. Trends Microbiol. 2014;22(11):648-655. doi:10.1016/j.tim.2014.06.007
9. Balasubramanian R., Im J., Lee J. S., et al. The global burden and epidemiology of invasive non-typhoidal Salmonella infections. Hum Vaccin Immunother. 2019;15(6):1421-1426. doi:10.1080/21645515.2018.1504717
10. Gal-Mor O. Persistent Infection and Long-Term Carriage of Typhoidal and Nontyphoidal Salmonellae. Clin Microbiol Rev. 2018;32(1): e00088-18. Published 2018 Nov 28. doi:10.1128/CMR.00088-18
11. Wang M., Qazi I. H., Wang L., et al. Salmonella virulence and immune escape. Microorganisms, 2020, Mar 13; 8(3):407 doi: 10.33990/microorganisms8030407
12. Hotinger J.A., Pendergrass H. A., May A. E. Molecular Targets and Strategies for Inhibition of the Bacterial Type III Secretion System (T3SS); Inhibitors Directly Binding to T3SS Components. Biomolecules. 2021 Feb 19; 11(2):316. doi: 10.3390/biom 11020316
13. Johnson R., Mylona E., Frankel G. Typhoidal Salmonella: Distinctive virulence factors and pathogenesis. Cell. Microbiol. 2018,20, e12939. doi: e12939.doi:10/1111/cmi.12939
14. Boichenko M.N., Kravtsova E. O., Budanova E. V., Volchkova E. V., Belaia O. F. Peculiarities of non-typhoidal serotypes Salmonella enterica in epithelial cells and macrophages. Infec. Bolezni. 2021; 19(2):126-131. (In Russ.) doi: 10.20953/1729-9225-2021-2-126-131 @@Бойченко М. Н., Кравцова Е. О., Буданова Е. В., Волчкова Е. В., Белая О. Ф. Особенности персистенции нетифоидных сероваров Salmonella enterica в эпителиальных клетках и макрофагах. Инфекционные болезни.2021;19(2):126-131. doi: 10.20953/1729-9225-2021-2-126-131
15. Knodler L. A. Salmonella enterica: living a double life in epithelial cells. Curr. Opin. Microbiol. 2015, 23, 23-31. doi: 10.1016/j.mib.2014.10.010
16. Henard C.A., Vazquez-Torres A. Nitric oxide and salmonella pathogenesis. Front. Microbiol. 2011, 2, 84. doi: 10.3389/fmicb.2011.00084
17. Parry-Hanson Kunadu A., Holmes M., Miller E. L., Grant A. J. Microbiological quality and antimicrobial resistance characterization of Salmonella spp. in fresh milk value chains in Ghana.Int. J. Food Microbiol. 2018, 277, 41-49. doi: 10.1016/j.injfoodmicro.2018.04.025
18. Boichenko M.N., Kravtsova E. O., Volchkova E. V., Belaia O. F. Some problems of molecular pathogenesis of intracellular parasitism of bacteria. Infec. Bolezni (infection diseases), 2017; 15(4):77-81. (In Russ.) doi: 10.20953/1729-9225-2017-4-77-81 @@Бойченко М. Н., Кравцова Е. О., Волчкова Е В., Белая О. Ф. Некоторые вопросы молекулярного патогенеза внутриклеточного паразитизма бактерий. Инфекционные болезни. 2017; 15(4):77-81. doi: 10.20953/1729-9225-2017-4-77-81.
19. Yamamoto M., Takeda K. Current views of toll-like receptor signaling pathways. Gastroenterol. Res. Pract. 2010, 2010, 240365. doi.10/1155/2010/240365
20. Broz P., Ohlson M. B., Monack D. M. Innate immune response to Salmonella typhimurium, a model enteric pathogen. Gut Microbes. 2012;3(2):62-70. doi:10.416/gmic.19141
21. Thiennimitr P., Winter S., Winter M. G., et al.Intestinal inflammation allows Salmonella to use ethanolamine to compete with the microbiota. Proc. Natl Acad Sci USA. 2011, 108(42): 17480-17485. doi: 10.1073/pnas.1107857108
22. Fang F. C. Antimicrobial actions of reactive oxygen species. MBio. 2011, 2(5): e00141-11. doi:10.1128/mBio.00141-11
23. Eisele N.A., Rubi T., Jacobson A., Manzanillo P. S., Cox J. S., et al. Salmonella require the fatty acid regulator PPARS for the establishment of a metabolic environment essential for long-term persistence. Cell Host Microbe. 2013 Aug 14; 14(2):171-182. doi: 10.1016/j.chom.2013.07.010
24. Brink T., Leiss V., Siegert P., Jehle D., et al. Salmonella Typhimurium effector SseI inhibits chemotaxis and increases host cell survival by deamidation of heterotrimeric Gi proteins. PLoS Pathog. 2018, 14(8):, e1007248. doi: 10.1371/journal.ppat.1007248
25. Bayer-Santos E., Durkin C. H., Rigano L. A., Kupz A., et al. The Salmonella effector SteD mediates MARCH8-dependent ubiquitination of MHC II molecules and inhibits T cell activation. Cell Host Microbe 2016, 20(5):584-595. doi: 10.1016/j.chom.2016.10.007
26. Tobar J.A., Carreno L. J., Bueno S. M., Gonzalez P. A., et al. Virulent Salmonella enterica serovar typhimurium evades adaptive immunity by preventing dendritic cells from activating T cells. Infect. Immun. 2006, 74(11):6438-48. doi: 10.1128/IAI.00063-06
27. Cheminay C., Mohlenbrink A., Hensel M.Intracellular Salmonella inhibit antigen presentation by dendritic cells. J. Immunol. 2005, 174(5):2892-2899. doi: 10.1049/jimmunol.174.5.2892
28. Liao A.P., Petrof E. O., Kuppireddi S., et al. Salmonella type III effector AvrA stabilizes cell tight junctions to inhibit inflammation in intestinal epithelial cells. PLoS One. 2008;3(6): e2369. Published 2008 Jun 4. doi:10.1371/journal.pone.0002369
29. Karamzin A.M., Ropot A. V., Bosh’ian R. E. Relationship of mucin-degrading bacterium Akkermansia muciniphila with colorectal cancer. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2020,178(6): 158-165. (In Russ.) doi: 10.31146 /1682-8658-ecg-178-6-158-165 @@Карамзин А. М., Ропот А. В., Бошьян Р. Е. Взаимосвязь муколитической бактерии Akkermansia muciniphila с колоректальным раком. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2020.178(6):158-165. doi: 10.31146 /1682-8658-ecg-178-6-158-165.
30. Mughine-Gras L., Shaapveld M., Kremer S., et al. Increased colon cancer risk after severe Salmonella infection. PLos One 2018, 13(1): e0189721 doi; 10.1371/journal.pone.0189721 PMCID: PMC5771566
31. Sheremet A. B., Nesterenko L. N., Zigangirova N. A. Pseudomonas aeruginosa type three-secretion system as a target for development of antiviru-lence drugs. Molekulyarnaya Genetika, Mikrobiologiya i Virusologiya (Molecular Genetics, Microbiology and Virology). 2020;38(1):3-14 (Russian). doi: 10.17116/molgen202038011 3 @@Шеремет А. Б., Нестеренко Н. А., Зигангирова Н. А. Третья транспортная система Pseudomonas aeruginosa как мишень для разработки антивирулентных препаратов. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2020-Т38-№ 1-с.3-14. doi: 10.17116/molgen202038011 3
32. Zhang Y., LiuY., Wang T., Deng X., Chu X. Natural compound sanguinarine chloride targets the III type secretion system of Salmonella enterica serovar Typhimurium. Biochem. Biophys Rep. 2018 May 9;14:149-154. doi: 10.1016/j.bbrep.2018.04.011
33. Tsou L.K., Lara-Tadjero M., Figura R. J. et al. Antibacterial flavonoids from medicinal plants covalently inactivate type III protein secretion substrates. J. Am. Chem. Soc. 2016, 138(7): 2209-2218. doi: 10.1021/jacs.5b11575
Рецензия
Для цитирования:
Бойченко М.Н., Бошьян Р.Е., Буданова Е.В., Усатова Г.Н. Особенности молекулярного патогенеза гастроэнтерита, вызванного нетифоидными сероварами сальмонелл. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2022;(9):216-221. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-205-9-216-221
For citation:
Boichenko M.N., Bosh’Ian R.E., Budanova E.V., Usatova G.N. Some peculiarities of the molecular pathogenesis of gastroenteritis caused by non-typhoidal Salmonella. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2022;(9):216-221. (In Russ.) https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-205-9-216-221
Просмотров: 87
Послать статью по эл. почте 